<?xml version="1.0" encoding="UTF-8"?>
<!DOCTYPE article PUBLIC "-//NLM//DTD JATS (Z39.96) Journal Publishing DTD v1.3 20210610//EN" "JATS-journalpublishing1-3.dtd">
<article article-type="research-article" dtd-version="1.3" xmlns:mml="http://www.w3.org/1998/Math/MathML" xmlns:xlink="http://www.w3.org/1999/xlink" xmlns:xsi="http://www.w3.org/2001/XMLSchema-instance" xml:lang="ru"><front><journal-meta><journal-id journal-id-type="publisher-id">endoserg</journal-id><journal-title-group><journal-title xml:lang="ru">Эндокринная хирургия</journal-title><trans-title-group xml:lang="en"><trans-title>Endocrine Surgery</trans-title></trans-title-group></journal-title-group><issn pub-type="ppub">2306-3513</issn><issn pub-type="epub">2310-3965</issn><publisher><publisher-name>Типография «Печатных дел Мастер»</publisher-name></publisher></journal-meta><article-meta><article-id pub-id-type="doi">10.14341/serg10039</article-id><article-id custom-type="elpub" pub-id-type="custom">endoserg-10039</article-id><article-categories><subj-group subj-group-type="heading"><subject>Research Article</subject></subj-group><subj-group subj-group-type="section-heading" xml:lang="ru"><subject>Обзоры литературы</subject></subj-group><subj-group subj-group-type="section-heading" xml:lang="en"><subject>Review of literature</subject></subj-group></article-categories><title-group><article-title>Околощитовидные железы: нормальное развитие, анатомическое и гистологическое строение</article-title><trans-title-group xml:lang="en"><trans-title>Parathyroid glands: the normal development, anatomy and histological structure</trans-title></trans-title-group></title-group><contrib-group><contrib contrib-type="author" corresp="yes"><contrib-id contrib-id-type="orcid">https://orcid.org/0000-0002-9717-9742</contrib-id><name-alternatives><name name-style="eastern" xml:lang="ru"><surname>Мокрышева</surname><given-names>Наталья Георгиевна</given-names></name><name name-style="western" xml:lang="en"><surname>Mokrysheva</surname><given-names>Natalia G.</given-names></name></name-alternatives><bio xml:lang="ru"><p>д.м.н., профессор</p></bio><bio xml:lang="en"><p>MD, PhD, Professor</p></bio><email xlink:type="simple">nm70@mail.ru</email><xref ref-type="aff" rid="aff-1"/></contrib><contrib contrib-type="author" corresp="yes"><contrib-id contrib-id-type="orcid">https://orcid.org/0000-0001-7963-5022</contrib-id><name-alternatives><name name-style="eastern" xml:lang="ru"><surname>Крупинова</surname><given-names>Юлия Александровна</given-names></name><name name-style="western" xml:lang="en"><surname>Krupinova</surname><given-names>Julia A.</given-names></name></name-alternatives><bio xml:lang="en"><p>MD</p></bio><email xlink:type="simple">j.krupinova@gmail.com</email><xref ref-type="aff" rid="aff-1"/></contrib><contrib contrib-type="author" corresp="yes"><contrib-id contrib-id-type="orcid">https://orcid.org/0000-0001-6687-3240</contrib-id><name-alternatives><name name-style="eastern" xml:lang="ru"><surname>Воронкова</surname><given-names>Ия Александровна</given-names></name><name name-style="western" xml:lang="en"><surname>Voronkova</surname><given-names>Iya A.</given-names></name></name-alternatives><bio xml:lang="ru"><p>к.м.н.</p></bio><bio xml:lang="en"><p>MD, PhD</p></bio><email xlink:type="simple">iya-v@yandex.ru</email><xref ref-type="aff" rid="aff-2"/></contrib></contrib-group><aff-alternatives id="aff-1"><aff xml:lang="ru"><institution>&lt;p&gt;ФГБУ &amp;ldquo;Национальный медицинский исследовательский центр эндокринологии&amp;rdquo; Минздрава России&lt;/p&gt;</institution><country>Россия</country></aff><aff xml:lang="en"><institution>&lt;p&gt;Endocrinology Research Centre&lt;/p&gt;</institution><country>Russian Federation</country></aff></aff-alternatives><aff-alternatives id="aff-2"><aff xml:lang="ru"><institution>&lt;p&gt;ФГБУ &amp;ldquo;Национальный медицинский исследовательский центр эндокринологии&amp;rdquo; Минздрава России; ГБУЗ МО &amp;ldquo;Московский областной научно-исследовательский клинический институт им. М.Ф. Владимирского&amp;rdquo;&lt;/p&gt;</institution><country>Россия</country></aff><aff xml:lang="en"><institution>&lt;p&gt;Endocrinology Research Centre; M.F. Vladimirskiy Moscow Regional Research Clinical Institute&lt;/p&gt;</institution><country>Russian Federation</country></aff></aff-alternatives><pub-date pub-type="collection"><year>2018</year></pub-date><pub-date pub-type="epub"><day>21</day><month>05</month><year>2019</year></pub-date><volume>12</volume><issue>4</issue><fpage>178</fpage><lpage>187</lpage><permissions><copyright-statement>Copyright &amp;#x00A9; Мокрышева Н.Г., Крупинова Ю.А., Воронкова И.А., 2018</copyright-statement><copyright-year>2018</copyright-year><copyright-holder xml:lang="ru">Мокрышева Н.Г., Крупинова Ю.А., Воронкова И.А.</copyright-holder><copyright-holder xml:lang="en">Mokrysheva N.G., Krupinova J.A., Voronkova I.A.</copyright-holder><license license-type="creative-commons-attribution" xlink:href="https://creativecommons.org/licenses/by/4.0/" xlink:type="simple"><license-p>This work is licensed under a Creative Commons Attribution 4.0 License.</license-p></license></permissions><self-uri xlink:href="https://www.surg-endojournals.ru/jour/article/view/10039">https://www.surg-endojournals.ru/jour/article/view/10039</self-uri><abstract><p>Околощитовидные железы (ОЩЖ) – ключевые регуляторы обмена кальция и фосфора в организме. Впервые они были описаны англичанином Ричардом Оуэном в 1849 г. В большинстве случаев у человека две пары ОЩЖ – верхняя и нижняя. В 13% случаев встречается более четырех ОЩЖ. Железы развиваются между пятой и двенадцатой неделями гестации из клеточного материала выстилки глоточных карманов: верхние железы – из IV, нижние – из III кармана. Продукция паратиреоидного гормона начинается на 83/7 неделе гестации. Формирование, миграция, дифференцировка и функционирование ОЩЖ детерминированы рядом генов, изменения в которых могут приводить к дисбалансу этих процессов. При нарушении миграции возможна эктопия ОЩЖ (до 22% случаев), при этом наиболее частыми местами эктопической локализации ОЩЖ являются паренхима тимуса и щитовидной железы. ОЩЖ обладает хорошо развитой сосудистой сетью и окружена тонкой фиброзной капсулой. Паренхима желез представлена в основном двумя типами клеток: главными (активные и неактивные формы) и оксифильными. В течение жизни соотношение типов клеток паренхимы ОЩЖ и их активность меняются, как  и характеристики стромы. </p></abstract><trans-abstract xml:lang="en"><p>Parathyroid glands (PG) are endocrine glands, which are the most important humoral regulators of calcium and phosphorus metabolism in the body. They were first described by an Englishman Richard Owen in 1849. Most of patients have four PG – upper and lower. In 13% of cases there are more than four PG. The glands arise as diverticula from the endoderm of the third and fourth branchial pouches between the fifth and twelfth week of gestation. The IV branchial pouch forms the upper gland, and III pouch forms the inferior gland.</p><p>The parathyroid hormone production has been demonstrated as early as 83/7 weeks gestational age. The formation, migration, differentiation and functioning of the PGs are determined by a number of genes and changes in them could lead to disfunction in these processes. The ectopic of PG is possible when migration violation (up to 22% of cases). The most common location of the ectopic PG is parenchyma of the thymus and thyroid gland. Each PG is richly vascularized and it is surrounded by a thin connective tissue. In adults, there are two types of parenchymal cells: the chief cells (active and inactive forms) and the oxyphil cells. During the life, the ratio of types of parenchymal cells and their activity have been changing, as well as the characteristics of the stroma.</p></trans-abstract><kwd-group xml:lang="ru"><kwd>околощитовидные железы</kwd><kwd>анатомия</kwd><kwd>эмбриология</kwd><kwd>генетика</kwd><kwd>история медицины</kwd><kwd>гистология</kwd></kwd-group><kwd-group xml:lang="en"><kwd>parathyroid gland</kwd><kwd>anatomy</kwd><kwd>embryology</kwd><kwd>genetics</kwd><kwd>history</kwd><kwd>histology</kwd></kwd-group></article-meta></front><body><sec><title>Введение</title><p>Околощитовидные железы (лат. glandulae parathyroideae, ОЩЖ) синтезируют паратиреоидный гормон (ПТГ), регулирующий обмен кальция и фосфора в организме. Кальций – один из важнейших элементов в жизнедеятельности человека. Его внеклеточная и внутриклеточная концентрация в организме находится в узком диапазоне, что обеспечивает работу многих процессов в организме (сокращение скелетных мышц кардиомиоцитов и гладкой мускулатуры, передача нервного импульса, регуляция обмена веществ, эндо- и экзокринная секреция, деление клеток, регуляция гликогенолиза и глюконеогенеза, минерализация костной ткани и т.п.). Чувствительность к концентрации ионов кальция в сыворотке крови очень высока, и активация компенсаторных механизмов происходит при изменении его уровня даже на 1%. Гомеостаз кальция представляет собой сложный сбалансированный многокомпонентный механизм, который работает посредством специфических кальций-чувствительных рецепторов (CaSR), рецепторов к ПТГ (PTH1-R), витамину D (VDR) и обеспечивается согласованной работой ОЩЖ, кишечника, почек и костной ткани. Концентрация фосфора контролируется менее строго. Он играет важную роль в энергетическом обмене, необходим для работы ферментов и является важным составляющим плазматической мембраны. Две трети фосфора плазмы представлено в основном фосфолипидами, еще треть приходится на неорганические соединения, и 5% составляют комплексы с кальцием или магнием [1, 2].</p></sec><sec><title>История открытия околощитовидных желез</title><p>ОЩЖ открыты в 1849 г. англичанином Ричардом Оуэном (1804–1892), который обнаружил их, исследуя тело индийского носорога. Он описал ОЩЖ как “небольшое компактное желтое железистое тело, прилегающее к щитовидной железе”. Гистологическое исследование органа не проводилось. 12 февраля 1852 г. Оуэн презентовал свою находку на собрании Зоологического общества в Лондоне, а в 1862 г. опубликовал работу в трудах “Transactions of the Society” [<xref ref-type="bibr" rid="cit3">3</xref>].</p><p>Первое подробное описание и термин “околощитовидные железы” дал швейцарец Ивар Виктор Сандерстрем (1852–1889). В 1877 г. он обнаружил “эпителиальные тельца овальной формы, тесно прилегающие к задней поверхности долей щитовидной железы”, сначала у животных, а в дальнейшем идентифицировал их в ходе 50 аутопсий людей. Несмотря на это открытие, большое внимание новому органу в то время не уделялось, и лишь в начале ХХ века наступила эра изучения и понимая клинической значимости ОЩЖ.</p><p>Впервые характерные поражения костей и взаимосвязь их с патологией ОЩЖ систематизировал и представил профессор патологии Страсбургского университета Фредерик Даниель фон Реклингхаузен (1833–1910) в 1891 г. Несмотря на то что сам ученый заблуждался относительно причинно-следственной связи костных поражений и ОЩЖ, синдром был назван в его честь [<xref ref-type="bibr" rid="cit5">5</xref>]. В 1907 г. венский патологоанатом Джейкоб Эрдгейм (1874–1937) сообщил случаи патологически увеличенных ОЩЖ у пациентов, умирающих от прогрессирующей костной болезни [<xref ref-type="bibr" rid="cit6">6</xref>]. Лечение костных поражений с помощью удаления опухоли ОЩЖ впервые предложил профессор Фридрик Шлягенхофер (1866–1930). Он обосновал свою гипотезу о первопричине опухоли ОЩЖ в формировании костных изменений, однако его идея не была поддержана медицинским сообществом того времени [<xref ref-type="bibr" rid="cit7">7</xref>]. Первое целенаправленное удаление аденомы ОЩЖ с целью лечения болезни Реклингхаузена произведено только 30 июля 1925 г. австрийским хирургом Феликсом Мандлемом (1892–1957) из университетской хирургической клиники Вены [<xref ref-type="bibr" rid="cit8">8</xref>]. В постоперационном периоде был подтвержден регресс костных изменений, что подтвердило предположение Ф. Шлягенхофера о первопричине патологии ОЩЖ в развитии костных проявлений при первичном гиперпаратиреозе (ПГПТ). В России впервые хирургическое лечение ПГПТ произведено в 1925 г. Владимиром Андреевичем Оппелем, однако целью операции являлась безуспешная попытка коррекции таким образом артериальной гипертензии.</p><p>Необходимо упомянуть капитана Чарльза Мартелла (Charles Martell), который стал известным клиническим примером пациента с ПГПТ, описанным Олбрайтом. Мартелл жаловался на плохое самочувствие, слабость, приступы почечных колик, а после перелома надколенника вследствие небольшой травмы был диагностирован ПГПТ. Доктора шесть раз потерпели неудачу в поиске опухоли ОЩЖ во время хирургических вмешательств. На седьмой раз им удалось обнаружить эктопированную ОЩЖ в средостении, однако капитан Мартелл скончался [<xref ref-type="bibr" rid="cit9">9</xref>].</p><p>Хирургические вмешательства на ОЩЖ стали выполняться в США, Европе, СССР, однако ввиду редкого выявления ПГПТ мастерство хирургов в паратиреоидэктомии совершенствовалось медленно, и к 1950 г. насчитывалось лишь несколько врачей, имевших опыт проведения подобных операций [<xref ref-type="bibr" rid="cit7">7</xref>]. Со временем число успешных паратиреоидэктомий постоянно увеличивалось. Олег Владимирович Николаев (1903–1980) многие годы руководил отделением хирургии Института экспериментальной эндокринологии и химии гормонов (ныне ФГБУ “НМИЦ эндокринологии” Минздрава России) и активно оперировал пациентов с гиперпаратиреозом, подчеркивая, что 95% времени операции занимает поиск измененной железы. В 80-х гг. профессор кафедры факультетской хирургии им. И.М. Сеченова Олег Сергеевич Шкроб уделял много внимания предоперационному поиску паратиромы.</p><p>После включения кальция в стандартное биохимическое исследование крови (в США и в Европе) в 70-е гг. XX столетия ПГПТ вышел из категории орфанных заболеваний [<xref ref-type="bibr" rid="cit10">10</xref>]. На сегодняшний день патология ОЩЖ, и в частности ПГПТ, является одним из самых распространенных эндокринных заболеваний.</p></sec><sec><title>Эмбриогенез околощитовидных желез</title><p>ОЩЖ развиваются между пятой и двенадцатой неделями гестации из клеточного материала выстилки глоточных карманов: верхние железы – из IV, нижние – из III кармана, в связи с этим в литературе можно встретить обозначения ОЩЖ IV и располагающихся к ним каудально ОЩЖ III. Вентральные участки (производные V кармана), образованные ультимобранхиальными тельцами, имеют нейроэктодермальное происхождение и являются результатом миграции клеток нервного гребня. Впоследствии они дифференцируются в кальцитонин-продуцирующие клетки в составе диффузной эндокринной системы. По мере того как ультимобранхиальные тельца включаются в заднелатеральные области щитовидной железы (ЩЖ), давая начало парафолликулярным клеткам (С-клеткам), верхние ОЩЖ вступают в тесное соприкосновение с ЩЖ, прикрепляясь к ее капсуле на этом участке. Развивающиеся железы отделяются от карманов в течение пятой недели онтогенеза и к седьмой неделе спускаются к ЩЖ. Тимус и нижние ОЩЖ имеют общее происхождение и вначале мигрируют вместе по направлению к грудной клетке, затем нижние ОЩЖ отделяются и занимают свое нормальное положение. При нарушении эмбриогенеза отделение происходит несвоевременно, что приводит к эктопическому расположению ОЩЖ [11–19].</p><p>Продукция ПТГ начинается через 8 нед и 3 дня от начала гестации (что доказано при проведении иммуногистохимического исследования с антителами к ПТГ, в виде единичных иммунопозитивных клеток). К 17–20-й неделям внутриутробного развития ПТГ продуцируется уже большинством клеток ОЩЖ [19–25].</p></sec><sec><title>Генетическая регуляция развития околощитовидных желез</title><p>В закладку ОЩЖ вносят вклад как клетки нервного гребя, так и клетки глоточной эндодермы. Развитие ОЩЖ проходит предположительно в три этапа: (I) формирование ОЩЖ, (II) миграция в их конечное местоположение и (III) дифференцировка в ПТГ-продуцирующие клетки. Вероятнее всего, клетки нервного гребня уже содержат информацию о локализации ОЩЖ. Эту информацию они получают от эволюционно консервативного семейства генов Hox, организованных в кластер паралогичных генов (Hox a, b, c и d). Гены Hox экспрессируются в эндодермальном эпителии, а также в нервном гребне до, во время и после миграции ОЩЖ в глоточные арки [<xref ref-type="bibr" rid="cit26">26</xref>]. В результате исследований на мышиных моделях было сформировано определенное представление о генетической регуляции развития ОЩЖ.</p><p>Этап I. Ген Rae28 необходим для правильной экспрессии гомеотических генов вдоль передне-задней оси. Мыши с недостаточностью Rae28 характеризуются такими пороками развития тканей, сформированных из нервного гребня, как изменение нормальной локализации ОЩЖ, гипоплазия тимуса и пороки сердца [<xref ref-type="bibr" rid="cit27">27</xref>]. Впервые аномалии ОЩЖ, связанные с делецией в результате неправильной гомологичной рекомбинации в эмбриональных стволовых клетках мыши, были описаны у Hoxa3-дефицитных животных, у которых отсутствовали ОЩЖ, тимус и наблюдалась гипоплазия ЩЖ [<xref ref-type="bibr" rid="cit28">28</xref>]. Экспрессия Hoxa3 не влияет ни на число нейронных клеток гребня, ни на их миграцию. Мутантные клетки быстрее теряют способность индуцировать дифференцировку окружающих тканей [<xref ref-type="bibr" rid="cit29">29</xref>]. При отсутствии транскрипции Pax9 у мышей также наблюдается отсутствие ОЩЖ и тимуса [<xref ref-type="bibr" rid="cit30">30</xref>].</p><p>Этап II. ОЩЖ развиваются нормально у мышей, у которых наблюдается недостаточность паралогичных геномных кластеров Hoxb3 и Hoxd3. Однако дальнейшее удаление одного аллеля Hoxa3 приводит к неспособности нормальной миграции ОЩЖ на свое место рядом с ЩЖ [<xref ref-type="bibr" rid="cit29">29</xref>].</p><p>Этап III. Ген Gcm2 (Glial cell missing 2) у мыши регулирует дифференцировку клеток ОЩЖ и начинает экспрессироваться примерно на 10-й эмбриональный день (Е10) в глоточной эндодерме [<xref ref-type="bibr" rid="cit31">31</xref>]. У Gcm2-дефицитных мышей ПТГ не экспрессируется в зачатке ОЩЖ, несмотря на присутствие паратироцитов [<xref ref-type="bibr" rid="cit32">32</xref>]. Это ярко отражает важное значение Gcm2 для дифференцировки клеток-предшественников ОЩЖ. Интересно, что ПТГ-позитивные клетки также могут быть обнаружены в тимусе мутантных мышей, что говорит о существовании по меньшей мере двух путей дифференцировки ПТГ-продуцирующих клеток [<xref ref-type="bibr" rid="cit26">26</xref>]. Gcm1 экспрессируется в тимусе более выраженно, вероятно для компенсации функции Gcm2. Интересно, что первая гомозиготная мутация человека в GCM2 была выявлена у пациентов с гипопаратиреозом [<xref ref-type="bibr" rid="cit33">33</xref>].</p><p>Также обнаружено, что у новорожденных мышей с дефицитом Pax1 ОЩЖ значимо уменьшены в размерах [<xref ref-type="bibr" rid="cit34">34</xref>]. Еще более резкое сокращение размеров ОЩЖ наблюдалось при сочетании дефицита Hoxa3 и Pax1, при котором ОЩЖ отсутствовали на поздних стадиях гестации [<xref ref-type="bibr" rid="cit34">34</xref>]. У Hoxa3-дефицитных эмбрионов вообще отсутствует сигнал Gcm2 [<xref ref-type="bibr" rid="cit34">34</xref>]. Следовательно, Hoxa3 необходим для индукции Gcm2, в то время как и Hoxa3, и Pax1 являются важными для поддержания правильной экспрессии Gcm2. С другой стороны, экспрессия Pax1 в зачатке ОЩЖ значительно снижена у мышей с дефицитом Hoxa3, что ставит Hoxa3 выше Pax1 в генетической линии [22, 29, 34].</p><p>Cиндром ДиДжорджи сочетает в себе дисплазию или отсутствие ОЩЖ и тимуса, а также пороки развития сердца. Считается, что у большинства пациентов наблюдается гомозиготная делеция центрального участка длинного плеча хромосомы 22 (22q11.2) размером 1,5–3 млн п.н. Однако известны случаи делеции 10р13, 17р13, 18q21 и др. с теми же клиническими проявлениями. Выделены гены-кандидаты, одновременно участвующие в развитии нескольких компонентов синдрома ДиДжорджи [35–36]. Среди них TBX1, экспрессирующийся в глоточной эндодерме [35–37]. Мыши с гетерозиготной мутацией Tbx1 имели пороки развития аорты, в то время как у мышей с гомозиготной делецией наблюдалась гипоплазия ОЩЖ [35, 36, 38]. Вероятнее всего, при синдроме ДиДжорджи имеют место гемизиготные делеции, что указывает на наличие других генов в этом локусе, также способствующих развитию фенотипа этого синдрома. Так, D.L. Guris и соавт. продемонстрировали, что у мышей с гомозиготной мутацией Crkol наблюдаются врожденные пороки сердца, дефекты развития ОЩЖ и тимуса [<xref ref-type="bibr" rid="cit39">39</xref>].</p></sec><sec><title>Топография околощитовидных желез</title><p>В большинстве случаев у человека две пары ОЩЖ – верхняя и нижняя, однако в 13% встречается более четырех желез (описаны случаи, когда число ОЩЖ достигало 12), которые могут быть не только рудиментарными остатками нормально заложенных желез, но и истинными добавочными ОЩЖ, расположенными отдельно от основных [40–42].</p><p>В норме длина ОЩЖ составляет от 3 до 6 мм, ширина – от 2 до 4 мм, толщина – от 0,5 до 2,0 мм, при этом нижние железы крупнее верхних. Вес отдельных ОЩЖ может варьироваться в диапазоне 35–55 мг, а общая масса составляет 120 ± 3,5 мг у мужчин и 142 ± 5,2 мг у женщин [<xref ref-type="bibr" rid="cit19">19</xref>]. Железы окружены жировой тканью и отличаются от ткани ЩЖ цветом (как правило, желтовато-коричневого (охряного) цвета) и более плотной консистенцией. В большинстве случаев обе пары ОЩЖ расположены вдоль задней поверхности ЩЖ: верхняя – на уровне средней трети ЩЖ, нижние – на уровне нижней трети. Анатомическим ориентиром для поиска верхней пары является промежуток между ЩЖ и трахеей в радиусе 1 см от места перекреста n. recurrens и a. thyroidea inferior. ОЩЖ плотно прилежат к a. thyroidea inferior в месте, где n. recurrens подходят к гортани. Нижняя пара характеризуется значительно большей вариабельностью своей анатомической локализации в связи с особенностями их онтогенеза. Встречается локализация ниже, латеральнее и кзади от нижнего полюса ЩЖ, в толще фиброзных волокон, соединяющих нижний ее полюс и верхнюю поверхность вилочковой железы, интратиреоидно, внутритимусно, каротидно, в переднем или заднем средостении, в подслизистом слое стенки пищевода и нижних отделов глотки, в перикарде, по ходу блуждающих нервов [40, 41].</p><p>Литературные данные указывают, что эктопические железы могут встречаться до 22% случаев [43–46]. Z. Liu и соавт., изучая развитие тимуса и ОЩЖ с начала 6-й недели эмбриогенеза, доказали, что эктопированные ОЩЖ появляются уже на 7-й неделе эмбриогенеза в ходе исследования whole-mount in situ hybridization для Gcm2 [<xref ref-type="bibr" rid="cit47">47</xref>]. Миграция ОЩЖ во время развития плода из исходного местоположения в конечное юкстатиреоидное объясняет вариабельность локализаций ОЩЖ и ценность опыта хирурга при проведении паратиреоидэктомии.</p><p>Большинство исследований указывают, что чаще в нетипичном месте располагаются нижние ОЩЖ [43, 45], что может быть обусловлено нарушением их миграции во время эмбрионального развития, однако есть и работы с противоположными данными [<xref ref-type="bibr" rid="cit44">44</xref>]. Наиболее частым местом эктопической локализации ОЩЖ является паренхима тимуса и ЩЖ, позади пищеводного пространства (см. таблицу) [43–46].</p><p>Таблица. Топография эктопических ОЩЖ в различных исследованиях</p><table-wrap id="table-1"><table><tbody><tr><td>Характеристики исследования</td><td>Исследование</td></tr><tr><td>Gomes E.M. и соавт. [43]</td><td>Gunasekaran S. и соавт. [44]</td><td>Phitayakorn R., McHenry C.R. [45]</td><td>Roy M. и соавт. [46]</td></tr><tr><td>N пациентов/N ОЩЖ
(если указано)</td><td>35/143</td><td>346/</td><td>231/</td><td>1,562/</td></tr><tr><td>Клинический диагноз</td><td>ВГПТ</td><td>ПГПТ/ВГПТ</td><td>ПГПТ/ВГПТ/ТГПТ</td><td>ПГПТ</td></tr><tr><td>Количество эктопий</td><td>27 (18,9%)*,
из них 5 эктопированных ОЩЖ были добавочными</td><td>38</td><td>37 (16%)**</td><td>346 (22%)
Точные данные по расположению эктопий указаны для 202 пациентов</td></tr><tr><td></td></tr><tr><td>Локализация эктопии</td><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>паренхима тимуса </td><td>4 (15%)</td><td>14 (37%)</td><td>7 (19%)</td><td>77 (38%)</td></tr><tr><td>по ходу пищевода/позади пищевода</td><td>2 (7,4%)</td><td>16 (44%)</td><td>10 (28%)</td><td>62 (31%)</td></tr><tr><td>паренхима ЩЖ</td><td>9 (33,0%)</td><td>2 (5,2%)</td><td>6 (16%)</td><td>37 (18%)</td></tr><tr><td>пространство между ЩЖ и тимусом</td><td>5 (18,5%)</td><td></td><td>4 (11%)</td><td></td></tr><tr><td>средостение</td><td>2 (7,4%)</td><td></td><td>7 (19%)</td><td>13(6%)</td></tr><tr><td>заглоточное пространство</td><td>1 (3,7%)</td><td>3 (8%)</td><td></td><td></td></tr><tr><td>оболочка сонной артерии</td><td>2 (7,4%)</td><td>1 (2,6%)</td><td>1 (3%)</td><td>5 (3%)</td></tr><tr><td>в непосредственной близости к  возвратному гортанному нерву</td><td>1 (3,7%)</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>подчелюстная локация</td><td></td><td></td><td>2 (5%)</td><td></td></tr></tbody></table></table-wrap><p>Примечание: * – количество эктопированных желез (% от всех ОЩЖ, включенных в исследование); ** – количество пациентов с эктопированными ОЩЖ (доля от всех пациентов, включенных в исследование) [N (%)]; *** эктопии с неоднозначно указанной топикой не включены в таблицу. ПГПТ – первичный гиперпаратиреоз; ВГПТ – вторичный гиперпаратиреоз; ТГПТ – третичный гиперпаратиреоз.</p><p>Кровоснабжение ОЩЖ осуществляется из нижней и/или верхней щитовидных артерий (a. thyreoideae interior, a. thyreoideae superior), отток венозной крови осуществляется в вены ЩЖ, трахеи и пищевода. Большая часть эктопированных нижних ОЩЖ, располагающихся ниже дуги аорты, имеют эктопическое артериальное кровоснабжение из внутренней грудной артерии, тимической артерии или прямых ветвей аорты. Ввиду малого калибра сосудов требуются точные манипуляции хирурга в процессе идентификации и мобилизации ОЩЖ во время операции. Лимфатический дренаж осуществляется из субкапсулярного сплетения в верхние глубокие шейные, пара- и претрахеальные, позадиглоточные и глубокие нижние шейные лимфатические узлы [<xref ref-type="bibr" rid="cit48">48</xref>].</p><p>ОЩЖ иннервируются симпатической и парасимпатической системой, а также афферентными нервами. Источниками симпатической иннервации ОЩЖ являются верхние, средние, нижние шейные симпатические узлы, ганглии. Парасимпатическая иннервация ОЩЖ осуществляется блуждающим нервом, нисходящими и языкоглоточными нервами. Возвратный гортанный нерв (n. laryngeus recurrens) отходит от блуждающего нерва при его направлении к грудной полости. Правый возвратный гортанный нерв огибает снизу и сзади подключичную артерию, а левый – дугу аорты. Оба нерва поднимаются в борозде между пищеводом и трахеей, отдавая ветви к этим органам. От возвратного гортанного нерва отходят ветви к трахее, пищеводу, ЩЖ и ОЩЖ. Наружный гортанный нерв является ветвью верхнего гортанного нерва и иннервирует перстнещитовидную мышцу. Так как эта мышца участвует в движениях голосового аппарата, повреждение ее иннервации может привести к нарушению фонации. Наружный гортанный нерв часто располагается вплотную к сосудистой ножке верхней щитовидной артерии, поэтому нерв может получить травму при перевязке этих сосудов [49, 50]. У 6% людей отсутствует левая нижняя щитовидная артерия, иногда нерв проходит через ткань ЩЖ, в этих случаях поиск возвратного гортанного нерва для хирурга затруднен [51–53].</p></sec><sec><title>Нормальное гистологическое строение околощитовидных желез</title><p>Каждая ОЩЖ окружена тонкой, иногда неполной фиброзной капсулой (рис. 1). ОЩЖ обладают хорошо развитой сосудистой сетью. Артерии и вены, расположенные в капсуле органа, соединяются с артериолами, венулами и капиллярами, проходящими в фиброзных прослойках между паренхиматозными клетками [19, 54].</p><fig id="fig-1"><graphic xlink:href="endoserg-12-4-g001."><uri content-type="original_file">/jour/article/downloadSuppFile/10039/3467</uri></graphic></fig><p>Риc. 1. Нормальное строение ОЩЖ взрослого пациента с избыточной массой тела (окраска гематоксилином и эозином, ув. Ч4).</p><fig id="fig-2"><graphic xlink:href="endoserg-12-4-g002."><uri content-type="original_file">/jour/article/downloadSuppFile/10039/3468</uri></graphic></fig><p>Рис. 2. Нормальное строение ОЩЖ (окраска гематоксилином и эозином, Ч200). ОЩЖ заключена в тонкую соединительнотканную капсулу (стрелка). Паренхима железы представлена в основном главными клетками [<xref ref-type="bibr" rid="cit1">1</xref>] в разных фазах секреторного цикла, встречаются скопления оксифильных клеток [<xref ref-type="bibr" rid="cit2">2</xref>]. В строме адипоциты [<xref ref-type="bibr" rid="cit3">3</xref>] и хорошо развитая сосудистая сеть.</p><p>У взрослых паренхиматозные элементы ОЩЖ представлены двумя типами клеток: главные клетки (активные и неактивные формы) и оксифильные клетки (рис. 2). Также можно наблюдать переходную форму между главными и оксифильными клетками.</p><p>Главные клетки (ГК) полигональной формы, 8–12 мкм в диаметре. Границы клеток нечеткие, цитоплазма амфофильна или слегка эозинофильна, иногда светлая или вакуолизированная. Ядра главных клеток округлые, центрально расположены, четко очерчены, с плотным хроматином. В некоторых клетках хорошо различимы мелкие ядрышки. Клетки богаты гликогеном, и 70–80% главных клеток содержат заметные липидные капельки, соответствующие липидным тельцам, которые лучше всего визуализируются в неактивных клетках при электронной микроскопии [19, 54]. При обычной световой микроскопии неактивные главные клетки могут быть распознаны по вакуолизированной, светлой цитоплазме, содержащей липиды, гликоген и лизосомы [<xref ref-type="bibr" rid="cit19">19</xref>] (см. рис. 2). ГК со светлой цитоплазмой следует отличать от водянисто-светлых, которые встречаются при светлоклеточной гиперплазии и водянисто-светлоклеточных аденомах. Данный тип клеток характеризуется обильной светлой цитоплазмой, богатой вакуолями, синтезированными в аппарате Гольджи, и гликогеном [<xref ref-type="bibr" rid="cit19">19</xref>].</p><p>Ультраструктурное строение главных клеток характеризует их функциональную активность. Неактивные главные клетки имеют ровную цитоплазматическую мембрану. В их цитоплазме содержится большое количество депозитов гликогена и капельки жира, небольшое количество секреторных гранул и вариабельное число митохондрий. Главные клетки в активную секреторную фазу уменьшаются в размере, количество гликогена и липидов сокращается, секреторные гранулы перемещаются к периферии, а цитоплазматическая мембрана становится извилистой [<xref ref-type="bibr" rid="cit19">19</xref>].</p><p>Второй тип клеток в ОЩЖ у взрослых – оксифильные (онкоцитарные), которые считаются производными главных клеток, хотя до конца остается не ясным, что является стимулом для появления данной группы клеток (рис. 2). До пубертатного периода только единичные оксифильные клетки встречаются в ОЩЖ. Их прирост отмечается с началом периода полового созревания и продолжается в течение всей жизни. Они располагаются среди главных клеток в виде отдельно лежащих структур или скоплений, иногда формируют мелкие или крупные узелки. Оксифильные клетки характеризуются обильной зернистой эозинофильной цитоплазмой, имеют размер от 12 до 20 мкм в диаметре. Границы клеток четкие, ядро округлое, хроматин плотный, иногда видны четкие ядрышки. Цитоплазма оксифильных клеток полностью заполнена митохондриями, часто причудливой формы и размера, а также редкими лизосомами, гранулами липофусцина, встречаются капли жира. Аппарат Гольджи и эндоплазматический ретикулум развиты слабее, чем в главных клетках. Онкоцитарные клетки также содержат редкие секреторные гранулы [<xref ref-type="bibr" rid="cit19">19</xref>].</p><p>У взрослых паренхиматозные клетки формируют гнездные структуры, солидные поля, собираются в округлые или дольчатые массы, трабекулы или имеют смешанную архитектуру. ГК могут также образовывать небольшие ацинарные, железоподобные структуры и даже псевдофолликулы, содержащие эозинофильный ШИК-положительный (PAS)[1] материал, напоминающий коллоид [19, 54].</p><p>Стромальный жир у взрослого человека составляет около 50% объема стромы железы и редко превышает 17–20% площади органа (см. рис. 1, 2). Существует значительная вариабельность в количестве, размере и распределении жировых клеток у разных людей, среди четырех желез одного человека и в одной железе. В интратиреоидно расположенных ОЩЖ отмечается минимальное количество жировых клеток или полное их отсутствие [19, 54].</p></sec><sec><title>Возрастные изменения строения околощитовидных желез</title><p>У эмбриона человека ОЩЖ состоят из главных клеток со светлой цитоплазмой. В строме отмечается хорошо развитая сосудистая сеть и не встречаются жировые клетки. Соединительная ткань развита слабо, что обусловливает компактный тип строения железы. Оксифильные клетки в ОЩЖ младенцев и детей отсутствуют и появляются с началом периода полового созревания, в дальнейшем их количество постепенно увеличивается [<xref ref-type="bibr" rid="cit19">19</xref>]. Внутриклеточный нейтральный жир у детей выявляется в 30–40% главных клеток, а у взрослых людей до 80% [19, 54]. У плодов и детей, а также молодых взрослых интерстиций состоит только из капиллярной сети и межклеточного пространства. Коллагена в строме мало или он отсутствует вовсе. С возрастом отмечается очаговое увеличение количества коллагеновых волокон преимущественно периваскулярно [<xref ref-type="bibr" rid="cit19">19</xref>].</p><p>Адипоциты редко встречаются у младенцев и детей. В конце первого десятилетия появляются стромальные жировые клетки, а их численность возрастает на протяжении всей жизни. Значительный прирост адипоцитов зафиксирован в период полового созревания, особенно у женщин. С возрастом количество адипоцитов продолжает увеличиваться, достигая максимума с третьей по пятую декады жизни [<xref ref-type="bibr" rid="cit19">19</xref>].</p><p>Со временем активность ОЩЖ снижается, о чем свидетельствует количество клеток в состоянии покоя: в период полового созревания только 30–40% главных клеток ОЩЖ находятся в фазе покоя, у взрослых – 70–80% [19, 54].</p></sec><sec><title>Заключение</title><p>В настоящее время накоплено немало данных о строении, функции и регуляции ОЩЖ, а изучение генетических и патоморфологических причин развития их патологических состояний занимает умы многих исследователей.</p></sec><sec><title>Дополнительная информация</title><p>Источник финансирования. Поисково-аналитическая работа и подготовка статьи осуществлены на личные средства авторского коллектива.</p><p>Конфликт интересов. Авторы декларируют отсутствие явных и потенциальных конфликтов интересов, связанных с публикацией настоящей статьи.</p><p>Информация о вкладе каждого автора: Мокрышева Н.Г. – концепция статьи, анализ литературных данных, написание и редактирование текста; Крупинова Ю.А. – анализ литературы, дизайн статьи, написание и редактирование текста; Воронкова И.А. – работа с литературными источниками, написание текста, подготовка микрофотографий. Все авторы внесли существенный вклад в проведение поисково-аналитической работы и подготовку статьи, прочли и одобрили финальную версию до публикации.</p></sec><sec><title>Примечание: </title><p>[1] ШИК-реакция (Шифф-йодная кислота), PAS-реакция (Periodic Acid-Schiff) – гистохимический метод, с помощью которого можно выявить полисахариды, гликозаминогликаны, мукопротеины, гликопротеины, гликолипиды и фосфолипиды.</p></sec></body><back><ref-list><title>References</title><ref id="cit1"><label>1</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Hoorn EJ, Zietse R. Disorders of calcium and magnesium balance: a physiology-based approach. Pediatr Nephrol. 2013;28(8):1195-1206. doi: https://doi.org/10.1007/s00467-012-2350-2.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Hoorn EJ, Zietse R. Disorders of calcium and magnesium balance: a physiology-based approach. Pediatr Nephrol. 2013;28(8):1195-1206. doi: https://doi.org/10.1007/s00467-012-2350-2.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit2"><label>2</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Komoroski M, Azad N, Camacho P. Disorders of bone and bone mineral metabolism. Handb Clin Neurol. 2014; 120:865-887. doi: https://doi.org/10.1016/B978-0-7020-4087-0.00058-9.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Komoroski M, Azad N, Camacho P. Disorders of bone and bone mineral metabolism. Handb Clin Neurol. 2014; 120:865-887. doi: https://doi.org/10.1016/B978-0-7020-4087-0.00058-9.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit3"><label>3</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Owen R. On the anatomy of the Indian rhinoceros. Trans Zool Soc Lond. 1852;(4):31-58. doi: https://doi.org/10.1111/j.1469-7998.1862.tb08046.x.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Owen R. On the anatomy of the Indian rhinoceros. Trans Zool Soc Lond. 1852;(4):31-58. doi: https://doi.org/10.1111/j.1469-7998.1862.tb08046.x.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit4"><label>4</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Eknoyan G. A history of the parathyroid glands. Am J Kidney Dis. 1995;26(5):801-807. doi: https://doi.org/10.1016/0272-6386(95)90447-6.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Eknoyan G. A history of the parathyroid glands. Am J Kidney Dis. 1995;26(5):801-807. doi: https://doi.org/10.1016/0272-6386(95)90447-6.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit5"><label>5</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Recklinghausen FV. Die fibröse oder deformierende Ostitis, die Osteomalazie und die osteoplastische Karzinose in ihren gegenseitigen Beziehungen. In: Festschrift fur Rudolf Virchow. Berlin; 1891. p. 1-89.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Recklinghausen FV. Die fibröse oder deformierende Ostitis, die Osteomalazie und die osteoplastische Karzinose in ihren gegenseitigen Beziehungen. In: Festschrift fur Rudolf Virchow. Berlin; 1891. p. 1-89.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit6"><label>6</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Erdheim J. Über die Dentinverkalkung im Nagezahn bei der Epithelkörperchentransplantation. Frankfurt Z Pathol. 1911; 7:295-347.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Erdheim J. Über die Dentinverkalkung im Nagezahn bei der Epithelkörperchentransplantation. Frankfurt Z Pathol. 1911; 7:295-347.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit7"><label>7</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Черенько С.М. Первичный гиперпаратиреоз: основы патогенеза, диагностики и хирургического лечения. Монография. – Киев; 2011. – С. 7-13. [Cheren&amp;apos;ko SM. Pervichnyy giperparatireoz: osnovy patogeneza, diagnostiki i khirurgicheskogo lecheniya. Monograph. Kiev; 2011. p. 7-13. (In Russ.)]</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Черенько С.М. Первичный гиперпаратиреоз: основы патогенеза, диагностики и хирургического лечения. Монография. – Киев; 2011. – С. 7-13. [Cheren&amp;apos;ko SM. Pervichnyy giperparatireoz: osnovy patogeneza, diagnostiki i khirurgicheskogo lecheniya. Monograph. Kiev; 2011. p. 7-13. (In Russ.)]</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit8"><label>8</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Mandl F. Therapeutischer Versuch bei Ostitis fibrosa generalisata mittels Extirpation eines Epithelkörperchentumors. Wien Klin Wschr.1925;50:1343-1344.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Mandl F. Therapeutischer Versuch bei Ostitis fibrosa generalisata mittels Extirpation eines Epithelkörperchentumors. Wien Klin Wschr.1925;50:1343-1344.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit9"><label>9</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Cope O. The study of hyperparathyroidism at the Massachusetts General Hospital. N Engl J Med. 1966;274(21):1174-1182. doi: https://doi.org/10.1056/NEJM196605262742105.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Cope O. The study of hyperparathyroidism at the Massachusetts General Hospital. N Engl J Med. 1966;274(21):1174-1182. doi: https://doi.org/10.1056/NEJM196605262742105.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit10"><label>10</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Макаров И.В. Гиперпаратиреоз: Учебно-методическое пособие для интернов, клинических ординаторов, врачей общей практики, эндокринологов и хирургов. – Самара: Офорт; 2014. – C. 4-7. [Makarov IV. Giperparatireoz: Uchebno-metodicheskoe posobie dlya internov, klinicheskikh ordinatorov, vrachey obshchey praktiki, endokrinologov i khirurgov. Samara: Ofort; 2014. p. 4-7. (In Russ.)]</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Макаров И.В. Гиперпаратиреоз: Учебно-методическое пособие для интернов, клинических ординаторов, врачей общей практики, эндокринологов и хирургов. – Самара: Офорт; 2014. – C. 4-7. [Makarov IV. Giperparatireoz: Uchebno-metodicheskoe posobie dlya internov, klinicheskikh ordinatorov, vrachey obshchey praktiki, endokrinologov i khirurgov. Samara: Ofort; 2014. p. 4-7. (In Russ.)]</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit11"><label>11</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Welsh DA. Concerning the parathyroid glands: a critical, anatomical, and experimental study. J Anat Physiol. 1898; 32(Pt 2):292-307.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Welsh DA. Concerning the parathyroid glands: a critical, anatomical, and experimental study. J Anat Physiol. 1898; 32(Pt 2):292-307.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit12"><label>12</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Gilmour JR. The embryology of the parathyroid glands, the thymus and certain associated rudiments. J Pathol Bacteriol. 1937;45(3):507-522. doi: https://doi.org/10.1002/path.1700450304.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Gilmour JR. The embryology of the parathyroid glands, the thymus and certain associated rudiments. J Pathol Bacteriol. 1937;45(3):507-522. doi: https://doi.org/10.1002/path.1700450304.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit13"><label>13</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Weller GL Jr. Development of the thyroid, parathyroid and thymus glands in man. Contrib Embryol Carnegie Inst Wash. 1933;24:93-140.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Weller GL Jr. Development of the thyroid, parathyroid and thymus glands in man. Contrib Embryol Carnegie Inst Wash. 1933;24:93-140.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit14"><label>14</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Norris EH. The parathyroid glands and the lateral thyroid in man: their orphogenesis, istogenesis, topographic anatomy and prenatal growth. Contrib Endocrinol Carnegie Intst Wash. 1937;26:247-307.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Norris EH. The parathyroid glands and the lateral thyroid in man: their orphogenesis, istogenesis, topographic anatomy and prenatal growth. Contrib Endocrinol Carnegie Intst Wash. 1937;26:247-307.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit15"><label>15</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Xu PX, Zheng W, Laclef C, et al. Eya1 is required for the morphogenesis of mammalian thymus, parathyroid and thyroid. Development. 2002;129(13):3033-3044.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Xu PX, Zheng W, Laclef C, et al. Eya1 is required for the morphogenesis of mammalian thymus, parathyroid and thyroid. Development. 2002;129(13):3033-3044.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit16"><label>16</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Graham A. Development of the pharyngeal arches. Am J Med Genet A. 2003;119A(3):251-256. doi: https://doi.org/10.1002/ajmg.a.10980.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Graham A. Development of the pharyngeal arches. Am J Med Genet A. 2003;119A(3):251-256. doi: https://doi.org/10.1002/ajmg.a.10980.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit17"><label>17</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Grevellec A, Tucker AS. The pharyngeal pouches and clefts: Development, evolution, structure and derivatives. Semin Cell Dev Biol. 2010;21(3):325-332. doi: https://doi.org/10.1016/j.semcdb.2010.01.022.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Grevellec A, Tucker AS. The pharyngeal pouches and clefts: Development, evolution, structure and derivatives. Semin Cell Dev Biol. 2010;21(3):325-332. doi: https://doi.org/10.1016/j.semcdb.2010.01.022.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit18"><label>18</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Le Lievre CS, Le Douarin NM. Mesenchymal derivatives of the neural crest: analysis of chimaeric quail and chick embryos. J Embryol Exp Morphol. 1975;34(1):125-154.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Le Lievre CS, Le Douarin NM. Mesenchymal derivatives of the neural crest: analysis of chimaeric quail and chick embryos. J Embryol Exp Morphol. 1975;34(1):125-154.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit19"><label>19</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Roth SI, Sadow PM, Johnson NB, Abu-Jawdeh GM. Parathyroid. In: Mills SE. Histology for Pathologists. 4th ed. Philadelphia: Lippincott Williams &amp; Wilkins; 2012. p. 1209-1211.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Roth SI, Sadow PM, Johnson NB, Abu-Jawdeh GM. Parathyroid. In: Mills SE. Histology for Pathologists. 4th ed. Philadelphia: Lippincott Williams &amp; Wilkins; 2012. p. 1209-1211.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit20"><label>20</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Norris EH. Anatomical evidence of prenatal function of the human parathyroid glands. Anat Rec. 1946;96(2):129-141. doi: https://doi.org/10.1002/ar.1090960205.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Norris EH. Anatomical evidence of prenatal function of the human parathyroid glands. Anat Rec. 1946;96(2):129-141. doi: https://doi.org/10.1002/ar.1090960205.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit21"><label>21</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Nakagami K, Yamazaki Y, Tsunoda Y. An electron microscopic study of the human fetal parathyroid gland. Z Zellforch Microsk Anat. 1967;85(1):89-95. doi: https://doi.org/10.1007/bf00330589.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Nakagami K, Yamazaki Y, Tsunoda Y. An electron microscopic study of the human fetal parathyroid gland. Z Zellforch Microsk Anat. 1967;85(1):89-95. doi: https://doi.org/10.1007/bf00330589.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit22"><label>22</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Ishizak N, Shoumura S, Emura S, et al. Ultrastructure of the parathyroid gland of the mouse fetus after calcium chloride or ethylenediaminetetraacetic acid administration. Cells Tissues Organs. 1989;135(2):164-170. doi: https://doi.org/10.1159/000146747.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Ishizak N, Shoumura S, Emura S, et al. Ultrastructure of the parathyroid gland of the mouse fetus after calcium chloride or ethylenediaminetetraacetic acid administration. Cells Tissues Organs. 1989;135(2):164-170. doi: https://doi.org/10.1159/000146747.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit23"><label>23</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Leroyer-Alizon E, David L, Anast CS, Dubois PM. Immunocytological evidence for parathyroid hormone in human fetal parathyroid glands. J Clin Endocrinol Metab. 1981;52(3): 513-516. doi: https://doi.org/10.1210/jcem-52-3-513.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Leroyer-Alizon E, David L, Anast CS, Dubois PM. Immunocytological evidence for parathyroid hormone in human fetal parathyroid glands. J Clin Endocrinol Metab. 1981;52(3): 513-516. doi: https://doi.org/10.1210/jcem-52-3-513.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit24"><label>24</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Scothorne RJ. Functional capacity of fetal parathyroid glands with reference to their clinical use as homografts. Ann N Y Acad Sci. 2006;120(2):669-676. doi: https://doi.org/10.1111/j.1749-6632.1965.tb30693.x.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Scothorne RJ. Functional capacity of fetal parathyroid glands with reference to their clinical use as homografts. Ann N Y Acad Sci. 2006;120(2):669-676. doi: https://doi.org/10.1111/j.1749-6632.1965.tb30693.x.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit25"><label>25</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">MacIsaac RJ, Heath JA, Rodda CP, et al. Role of the fetal parathyroid glands and parathyroid hormone-related protein in the regulation of placental transport of calcium, magnesium and inorganic phosphate. Reprod Fertil Dev. 1991; 3(4):447. doi: https://doi.org/10.1071/rd9910447.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">MacIsaac RJ, Heath JA, Rodda CP, et al. Role of the fetal parathyroid glands and parathyroid hormone-related protein in the regulation of placental transport of calcium, magnesium and inorganic phosphate. Reprod Fertil Dev. 1991; 3(4):447. doi: https://doi.org/10.1071/rd9910447.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit26"><label>26</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Genetic Control of Parathyroid Gland Development. In: Naveh-Many T. Molecular Biology of the Parathyroid. Boston: Springer; 2005. p. 3-6. doi: https://doi.org/10.1007/0-387-27530-4.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Genetic Control of Parathyroid Gland Development. In: Naveh-Many T. Molecular Biology of the Parathyroid. Boston: Springer; 2005. p. 3-6. doi: https://doi.org/10.1007/0-387-27530-4.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit27"><label>27</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Takihara Y, Tomotsune D, Shirai M, et al. Targeted disruption of the mouse homologue of the Drosophila polyhomeotic gene leads to altered anteroposterior patterning and neural crest defects. Development. 1997;124(19):3673-3682.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Takihara Y, Tomotsune D, Shirai M, et al. Targeted disruption of the mouse homologue of the Drosophila polyhomeotic gene leads to altered anteroposterior patterning and neural crest defects. Development. 1997;124(19):3673-3682.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit28"><label>28</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Chisaka O, Capecchi MR. Regionally restricted developmental defects resulting from targeted disruption of the mouse homeobox gene hox-1.5. Nature. 1991;350(6318):473-479. doi: https://doi.org/10.1038/350473a0.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Chisaka O, Capecchi MR. Regionally restricted developmental defects resulting from targeted disruption of the mouse homeobox gene hox-1.5. Nature. 1991;350(6318):473-479. doi: https://doi.org/10.1038/350473a0.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit29"><label>29</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Manley NR, Capecchi MR. Hox group 3 paralogs regulate the development and migration of the thymus, thyroid, and parathyroid glands. Dev Biol. 1998;195(1):1-15. doi: https://doi.org/10.1006/dbio.1997.8827.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Manley NR, Capecchi MR. Hox group 3 paralogs regulate the development and migration of the thymus, thyroid, and parathyroid glands. Dev Biol. 1998;195(1):1-15. doi: https://doi.org/10.1006/dbio.1997.8827.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit30"><label>30</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Peters H, Neubuser A, Kratochwil K, Balling R. Pax9-deficient mice lack pharyngeal pouch derivatives and teeth and exhibit craniofacial and limb abnormalities. Genes Dev. 1998;12(17): 2735-2747. doi: https://doi.org/10.1101/gad.12.17.2735.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Peters H, Neubuser A, Kratochwil K, Balling R. Pax9-deficient mice lack pharyngeal pouch derivatives and teeth and exhibit craniofacial and limb abnormalities. Genes Dev. 1998;12(17): 2735-2747. doi: https://doi.org/10.1101/gad.12.17.2735.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit31"><label>31</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Kim J, Jones BW, Zock C, et al. Isolation and characterization of mammalian homologs of the Drosophila gene glial cells missing. Proc Natl Acad Sci USA. 1998;95(21):12364-12369. doi: https://doi.org/10.1073/pnas.95.21.12364.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Kim J, Jones BW, Zock C, et al. Isolation and characterization of mammalian homologs of the Drosophila gene glial cells missing. Proc Natl Acad Sci USA. 1998;95(21):12364-12369. doi: https://doi.org/10.1073/pnas.95.21.12364.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit32"><label>32</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Gunther T, Chen ZF, Kim J, et al. Genetic ablation of parathyroid glands reveals another source of parathyroid hormone. Nature. 2000;406(6792):199-203. doi: https://doi.org/10.1038/35018111.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Gunther T, Chen ZF, Kim J, et al. Genetic ablation of parathyroid glands reveals another source of parathyroid hormone. Nature. 2000;406(6792):199-203. doi: https://doi.org/10.1038/35018111.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit33"><label>33</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Ding C, Buckingham B, Levine MA. Familial isolated hypoparathyroidism caused by a mutation in the gene for the transcription factor GCMB. J Clin Invest. 2001;108(8): 1215-1220. doi: https://doi.org/10.1172/JCI13180.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Ding C, Buckingham B, Levine MA. Familial isolated hypoparathyroidism caused by a mutation in the gene for the transcription factor GCMB. J Clin Invest. 2001;108(8): 1215-1220. doi: https://doi.org/10.1172/JCI13180.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit34"><label>34</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Su D, Ellis S, Napier A, et al. Hoxa3 and pax1 regulate epithelial cell death and proliferation during thymus and parathyroid organogenesis. Dev Biol. 2001;236(2):316-329.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Su D, Ellis S, Napier A, et al. Hoxa3 and pax1 regulate epithelial cell death and proliferation during thymus and parathyroid organogenesis. Dev Biol. 2001;236(2):316-329.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit35"><label>35</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">doi: https://doi.org/10.1006/dbio.2001.0342.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">doi: https://doi.org/10.1006/dbio.2001.0342.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit36"><label>36</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Merscher S, Funke B, Epstein JA, et al. TBX1 is responsible for cardiovascular defects in velo-cardio-facial/DiGeorge syndrome. Cell. 2001;104(4):619-629. doi: https://doi.org/10.1016/s0092-8674(01)00247-1.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Merscher S, Funke B, Epstein JA, et al. TBX1 is responsible for cardiovascular defects in velo-cardio-facial/DiGeorge syndrome. Cell. 2001;104(4):619-629. doi: https://doi.org/10.1016/s0092-8674(01)00247-1.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit37"><label>37</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Lindsay EA, Vitelli F, Su H, et al. Tbx1 haploinsufficieny in the DiGeorge syndrome region causes aortic arch defects in mice. Nature. 2001;410(6824):97-101. doi: https://doi.org/10.1038/35065105.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Lindsay EA, Vitelli F, Su H, et al. Tbx1 haploinsufficieny in the DiGeorge syndrome region causes aortic arch defects in mice. Nature. 2001;410(6824):97-101. doi: https://doi.org/10.1038/35065105.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit38"><label>38</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Garg V, Yamagishi C, Hu T, et al. Tbx1, a DiGeorge syndrome candidate gene, is regulated by sonic hedgehog during pharyngeal arch development. Dev Biol. 2001;235(1):62-73. doi: https://doi.org/10.1006/dbio.2001.0283.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Garg V, Yamagishi C, Hu T, et al. Tbx1, a DiGeorge syndrome candidate gene, is regulated by sonic hedgehog during pharyngeal arch development. Dev Biol. 2001;235(1):62-73. doi: https://doi.org/10.1006/dbio.2001.0283.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit39"><label>39</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Jerome LA, Papaioannou VE. DiGeorge syndrome phenotype in mice mutant for the T-box gene, Tbx1. Nat Genet. 2001;27(3):286-291. doi: https://doi.org/10.1038/85845.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Jerome LA, Papaioannou VE. DiGeorge syndrome phenotype in mice mutant for the T-box gene, Tbx1. Nat Genet. 2001;27(3):286-291. doi: https://doi.org/10.1038/85845.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit40"><label>40</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Guris DL, Fantes J, Tara D, et al. Mice lacking the homologue of the human 22q11.2 gene CRKL phenocopy neurocristopathies of DiGeorge syndrome. Nat Genet. 2001;27(3): 293-298. doi: https://doi.org/10.1038/85855.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Guris DL, Fantes J, Tara D, et al. Mice lacking the homologue of the human 22q11.2 gene CRKL phenocopy neurocristopathies of DiGeorge syndrome. Nat Genet. 2001;27(3): 293-298. doi: https://doi.org/10.1038/85855.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit41"><label>41</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Wang C-A. The anatomic basis of parathyroid surgery. Ann Surg. 1976;183(3):271-275. doi: https://doi.org/10.1097/00000658-197603000-00010.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Wang C-A. The anatomic basis of parathyroid surgery. Ann Surg. 1976;183(3):271-275. doi: https://doi.org/10.1097/00000658-197603000-00010.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit42"><label>42</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Thompson MW, Gauger PG. Ectopic locations of parathyroid glands. In: Bilezikian JP, Marcus R, Levine MA, editors. The Parathyroids: Basic and Clinical Concepts. 2nd ed. San Diego: Academic Press; 2001. p. 499-514.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Thompson MW, Gauger PG. Ectopic locations of parathyroid glands. In: Bilezikian JP, Marcus R, Levine MA, editors. The Parathyroids: Basic and Clinical Concepts. 2nd ed. San Diego: Academic Press; 2001. p. 499-514.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit43"><label>43</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Adami S, Marcocci C, Gatti D. Epidemiology of primary hyperparathyroidism in Europe. J Bone Miner Res. 2002; 17 Suppl 2:N18-23.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Adami S, Marcocci C, Gatti D. Epidemiology of primary hyperparathyroidism in Europe. J Bone Miner Res. 2002; 17 Suppl 2:N18-23.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit44"><label>44</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Gomes EMS, Nunes RC, Lacativa PGS, et al. Ectopic and extranumerary parathyroid glands location in patients with hyperparathyroidism secondary to end stage renal disease. Acta Cir Bras. 2007;22(2):105-109. doi: https://doi.org/10.1590/s0102-86502007000200005.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Gomes EMS, Nunes RC, Lacativa PGS, et al. Ectopic and extranumerary parathyroid glands location in patients with hyperparathyroidism secondary to end stage renal disease. Acta Cir Bras. 2007;22(2):105-109. doi: https://doi.org/10.1590/s0102-86502007000200005.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit45"><label>45</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Gunasekaran S, Wallace H, Snowden C, et al. Parathyroid ectopia: development of a surgical algorithm based on operative findings. J Laryngol Otol. 2015;129(11):1115-1120. doi: https://doi.org/10.1017/S0022215115002273.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Gunasekaran S, Wallace H, Snowden C, et al. Parathyroid ectopia: development of a surgical algorithm based on operative findings. J Laryngol Otol. 2015;129(11):1115-1120. doi: https://doi.org/10.1017/S0022215115002273.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit46"><label>46</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Phitayakorn R, McHenry CR. Incidence and location of ectopic abnormal parathyroid glands. Am J Surg. 2006;191(3): 418-423. doi: https://doi.org/10.1016/j.amjsurg.2005.10.049.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Phitayakorn R, McHenry CR. Incidence and location of ectopic abnormal parathyroid glands. Am J Surg. 2006;191(3): 418-423. doi: https://doi.org/10.1016/j.amjsurg.2005.10.049.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit47"><label>47</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Roy M, Mazeh H, Chen H, Sippel RS. Incidence and localization of ectopic parathyroid adenomas in previously unexplored patients. World Journal of Surgery. 2012;37(1): 102-106. doi: https://doi.org/10.1007/s00268-012-1773-z.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Roy M, Mazeh H, Chen H, Sippel RS. Incidence and localization of ectopic parathyroid adenomas in previously unexplored patients. World Journal of Surgery. 2012;37(1): 102-106. doi: https://doi.org/10.1007/s00268-012-1773-z.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit48"><label>48</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Liu Z, Farley A, Chen L, et al. Thymus-associated parathyroid hormone has two cellular origins with distinct endocrine and immunological functions. PLoS Genet. 2010;6(12):e1001251. doi: https://doi.org/10.1371/journal.pgen.1001251.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Liu Z, Farley A, Chen L, et al. Thymus-associated parathyroid hormone has two cellular origins with distinct endocrine and immunological functions. PLoS Genet. 2010;6(12):e1001251. doi: https://doi.org/10.1371/journal.pgen.1001251.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit49"><label>49</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Oertli D, Udelsman R, editors. Surgery of the Thyroid and Parathyroid Glands. Berlin Heidelberg: Springer; 2012.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Oertli D, Udelsman R, editors. Surgery of the Thyroid and Parathyroid Glands. Berlin Heidelberg: Springer; 2012.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit50"><label>50</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Bellantone R, Boscherini M, Lombardi CP, et al. Is the identification of the external branch of the superior laryngeal nerve mandatory in thyroid operation? Results of a prospective randomized study. Surgery. 2001;130(6):1055-1059. doi: https://doi.org/10.1067/msy.2001.118375.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Bellantone R, Boscherini M, Lombardi CP, et al. Is the identification of the external branch of the superior laryngeal nerve mandatory in thyroid operation? Results of a prospective randomized study. Surgery. 2001;130(6):1055-1059. doi: https://doi.org/10.1067/msy.2001.118375.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit51"><label>51</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Droulias C, Tzinas S, Harlaftis N, et al. The superior laryngeal nerve. Am Surg. 1976;42(9):635-638.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Droulias C, Tzinas S, Harlaftis N, et al. The superior laryngeal nerve. Am Surg. 1976;42(9):635-638.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit52"><label>52</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Sherman JH, Colborn GL. Absence of the left inferior thyroid artery: clinical implications. Clin Anat. 2003;16(6):534-537. doi: https://doi.org/10.1002/ca.10195.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Sherman JH, Colborn GL. Absence of the left inferior thyroid artery: clinical implications. Clin Anat. 2003;16(6):534-537. doi: https://doi.org/10.1002/ca.10195.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit53"><label>53</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Page C, Foulon P, Strunski V. The inferior laryngeal nerve: surgical and anatomic considerations. Report of 251 thyroidectomies. Surg Radiol Anat. 2003;25(3-4):188-191. doi: https://doi.org/10.1007/s00276-003-0129-7.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Page C, Foulon P, Strunski V. The inferior laryngeal nerve: surgical and anatomic considerations. Report of 251 thyroidectomies. Surg Radiol Anat. 2003;25(3-4):188-191. doi: https://doi.org/10.1007/s00276-003-0129-7.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit54"><label>54</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Sturniolo G, D’Alia C, Tonante A, et al. The recurrent laryngeal nerve related to thyroid surgery. Am J Surg. 1999;177(6): 485-488. doi: https://doi.org/10.1016/s0002-9610(99)00101-4.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Sturniolo G, D’Alia C, Tonante A, et al. The recurrent laryngeal nerve related to thyroid surgery. Am J Surg. 1999;177(6): 485-488. doi: https://doi.org/10.1016/s0002-9610(99)00101-4.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit55"><label>55</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Казанцева И.А., Калинин А.П., Богатырев О.П. Принципы клинико-морфологического исследования околощитовидных желез при гиперпаратиреозе. Информационное письмо. – М.; 1997. – С. 3-15. [Kazantseva IА, Kalinin АP, Bogatyrev OP. Printsipy kliniko-morfologicheskogo issledovaniya okoloshchitovidnykh zhelez pri giperparatireoze. Information letter. Moscow; 1997. p. 3-15. (In Russ.)]</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Казанцева И.А., Калинин А.П., Богатырев О.П. Принципы клинико-морфологического исследования околощитовидных желез при гиперпаратиреозе. Информационное письмо. – М.; 1997. – С. 3-15. [Kazantseva IА, Kalinin АP, Bogatyrev OP. Printsipy kliniko-morfologicheskogo issledovaniya okoloshchitovidnykh zhelez pri giperparatireoze. Information letter. Moscow; 1997. p. 3-15. (In Russ.)]</mixed-citation></citation-alternatives></ref></ref-list><fn-group><fn fn-type="conflict"><p>The authors declare that there are no conflicts of interest present.</p></fn></fn-group></back></article>
